miRNA-375通過MYC/EMT對NSCLC細胞侵襲和遷移影響

　　[摘要] 目的 探究miRNA-375(miR-375)通過MYC/上皮間質轉化(EMT)對非小細胞肺癌(NSCLC)侵襲和遷移的影響。

　　方法 將未做任何處理的NSCLC細胞A549作為空白組，轉染空載慢病毒的A549細胞作為對照組，轉染表達miR-375慢病毒的A549細胞作為實驗組。采用實時熒光定量PCR(qRT-PCR)技術檢測miR-375在NSCLC組織和癌旁組織中的表達量，以及miR-375在正常肺組織細胞(BEAS-2B細胞)和A549細胞中的表達量;通過Transwell實驗檢測3組細胞的侵襲、遷移能力;采用Western blot檢測3組細胞中MYC蛋白和EMT相關蛋白(E-鈣黏蛋白、波形蛋白)的表達量。

　　結果 miR-375在NSCLC組織中的表達量顯著高于癌旁組織(t=16.88，P<0.05)，在A549細胞中的表達量顯著高于BEAS-2B細胞(t=8.51，P<0.05)。過表達miR-375后，實驗組與空白組和對照組相比，NSCLC細胞的侵襲(F=29.55，P<0.05)、遷移(F=90.21，P<0.05)能力增強，MYC蛋白表達增加(F=37.15，P<0.05)，E-鈣黏蛋白表達減少(F=47.25，P<0.05)，波形蛋白表達增加(F=77.64，P<0.05)。

　　結論 上調miR-375可以通過MYC/EMT影響NSCLC的侵襲和遷移能力。

　　[關鍵詞] 微RNAs;癌，非小細胞肺;基因，myc;上皮-間質轉化;細胞運動

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　　肺癌是最常見的惡性腫瘤之一，同時也是全球惡性腫瘤死亡的主要原因[1-2]，其中非小細胞肺癌(NSCLC)占所有肺癌的80%以上[3]。NSCLC目前的主要治療方法是手術、放療和化療，盡管放療和化療的應用使NSCLC預后得到很大改善，但其生存率還是很低[4]，所以NSCLC的靶向研究顯得尤為重要。近年來研究結果發現，miRNA對肺癌的進展、診斷以及治療起著關鍵作用，其在肺癌的治療研究中備受關注[5]。miRNA是一類長約20個氨基酸的小RNA，它可以與特定的靶點結合，影響靶位點的mRNA翻譯，進而影響相關蛋白的表達[6]。有研究表明，miRNA-375(miR-375)與腫瘤的侵襲、轉移和凋亡有著密切的聯系，而且miR-375的表達與癌癥病人的總生存率相關，所以推測miR-375可能是一種有用的臨床預后生物標志物[7-8]。JUNG等[9]研究發現，MYC可以受miR-375的調節進而影響腫瘤的進展和表型。MYC家族包括C-MYC、N-MYC和L-MYC，對腫瘤細胞的侵襲、遷移都有很重要的作用[10-11]。已有研究表明，一些藥物可以通過抑制MYC通路的激活來抑制人宮頸癌細胞的增殖、遷移和上皮間質轉化(EMT)[12];hsa-miR-24則可以通過調節c-MYC/EMT軸來抑制鼻咽癌細胞的轉移能力[13];MYC還可以通過抑制RPS19/EMT信號傳導的激活來抑制癌細胞的轉移[14]。本研究旨在探討miR-375是否可通過MYC/EMT對NSCLC的侵襲和遷移產生影響。

　　1 材料與方法

　　1.1 細胞與樣本

　　所用NSCLC細胞(A549)和正常肺組織細胞(BEAS-2B)由青島大學博雅樓實驗室凍存。A549細胞用RPMI-1640(HyClone，美國)培養液培養，BEAS-2B細胞用LHC-9(HyClone，美國)培養液培養，培養細胞時兩種培養液都加入體積分數0.10胎牛血清(索萊寶，北京)。含EDTA的胰蛋白酶(索萊寶，北京)用于消化貼壁細胞。NSCLC組織和癌旁組織的新鮮樣本各30例，來自青島市市立醫院。本研究的組織來源病人均簽署了書面同意書，研究獲青島大學附屬醫院倫理委員會批準。

　　1.2 細胞轉染

　　將A549細胞接種于96孔板中，每孔10 000個，置于含體積分數0.05 CO2的37 ℃培養箱中培養24 h。實驗共分3組，在96孔板中未做任何處理的A549細胞作為空白組，將轉染含空載體慢病毒(吉凱基因公司，上海)的A549細胞作為對照組，將轉染表達miR-375慢病毒(吉凱基因公司，上海)的A549細胞作為實驗組。將3組細胞置于培養箱繼續培養10 h后，移除96孔板中的培養液，更換新的培養液，每孔100 μL。然后繼續培養72 h，應用實時熒光定量PCR(qRT-PCR)技術檢測3組細胞中miR-375的表達量。

　　1.3 qRT-PCR

　　收集長勢良好的細胞，按照iso plus RNA提取試劑盒(Takara，日本)的說明書提取3組細胞的總RNA，用PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser(Perfect Real Time)(Takara，日本)將RNA反轉成cDNA，使用SYBR Premix Ex Taq RR420A(Takara，日本)進行qRT-PCR，檢測細胞中miR-375的表達。反應條件：95 ℃、30 s;95 ℃、5 s，60 ℃、30 s，40個循環;60 ℃、15 s。實驗所用引物均購自上海生工，其中U6作為miRNA-375的內源性參照。引物序列見表1。

　　1.4 Transwell小室實驗

　　①遷移實驗：向24孔板(康寧，美國)的3個孔中加入含體積分數0.15胎牛血清的培養液，每孔500 μL，將3個Transwell小室(康寧，美國)分別放入3個孔中。取3組細胞各5×104個分別接種于以上3個Transwell小室內，置于細胞培養箱中培養24 h后取出，用棉簽擦拭3個Transwell小室的內膜，之后小室用甲醇溶液固定10 min，用甲紫染色10 min，PBS洗3次，拍照，在顯微鏡下計數細胞。②侵襲實驗：將基質膠(康寧，美國)與完全培養液按1∶9的比例稀釋，將稀釋后的混合液按每孔100 μL加入Transwell小室中，置于37 ℃培養箱中4 h，其余實驗步驟同遷移實驗。

　　1.5 Western blot檢測

　　取3組細胞，用PBS洗2次后加入1 mL的PBS，使用細胞刮刀將細胞刮下分別放入3個離心管中，以5 000 r/min離心5 min。去上清留細胞沉淀，在細胞沉淀中加入細胞裂解液和蛋白酶抑制劑，冰上裂解30 min，以12 000 r/min離心10 min，上清即為總蛋白。將提取的蛋白質加入上樣緩沖液SDS-Loading Buffer，沸水浴煮5 min。取45 μg蛋白置SDS-PAGE凝膠中電泳，電泳結束后將膠中的蛋白條帶轉移到PVDF膜上(Millipore，美國)。用脫脂奶粉封閉2 h，在4 ℃下與MYC(1∶1 000，CST)、β-actin(1∶3 000，Bioss)、E-鈣黏蛋白(E-cadherin，1∶1 000，CST)、波形蛋白(Vimentin，1∶1 000，CST)的一抗一起孵育過夜;加入二抗(1∶1 000，Abcam)低速振蕩60 min。用超敏型化學發光底物試劑(ECL)進行蛋白條帶成像，分析條帶灰度值，計算各蛋白相對表達量。